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Poinsettia Problems 2020 : Le « point de basculement » et les tests de pesticides

C’est encore cette période de l’année où il faut faire un choix avec son poinsettia. Maintenez-vous le cap avec les ennemis naturels, ou abandonnez-vous votre programme bio et pulvérisez pour les aleurodes ? Et pulvériser avec QUOI ?

Ce billet contient des conseils sur la manière de tester les pesticides MAINTENANT, afin que, lorsqu’il s’agira de tester les pesticides, vous sachiez ce qui fonctionne – et ce qui ne fonctionne pas -.

Le « point de basculement » critique dans le Poinsettia :

Certains d’entre vous connaissent peut-être le « point de basculement des aleurodes » auquel j’ai fait référence dans plusieurs articles de blog (voir ce numéro du magazine Greenhouse Canada). C’est essentiellement à ce moment que les producteurs doivent décider s’ils doivent ou non passer à des produits chimiques pour lutter contre les aleurodes, afin de pouvoir obtenir une récolte propre. Si vous passez aux pesticides après la dernière semaine de septembre ou la première semaine d’octobre, vous n’aurez peut-être pas le temps d’augmenter votre population de mouches blanches si des applications répétées sont nécessaires.

Que se passe-t-il avec les aleurodes en 2020 ?

Cette année a été un véritable mélange. Certaines personnes ont peu de pression sur les aleurodes. D’autres ont des populations de départ très élevées, par exemple jusqu’à 60 % de plantes infestées d’aleurodes en août, même AVEC le trempage des boutures. Cette variation semble se produire chez les mêmes fournisseurs, mais les boutures peuvent provenir d’exploitations différentes.

Un poinsettia de 8 pouces avec une nouvelle croissance infestée de nymphes d’aleurodes (taches blanches sur la face inférieure de la feuille entre les nervures de la feuille).

Une pression de départ élevée peut signifier qu’il faut décider de pulvériser plus tôt (c’est-à-dire CETTE semaine). En fin de compte, votre décision devra être fondée sur plusieurs facteurs propres à votre exploitation, et non pas seulement sur la mesure approximative du pourcentage d’infestation. Voici quelques questions à poser :

Votre principale variété rouge est-elle fortement touchée ? Dans toutes les régions ou une seule ?
Avez-vous des preuves de l’efficacité de votre programme de biocontrôle ? (Encore une fois, dans toutes les régions ?)
Voyez-vous une colonisation d’aleurodes sur les nouvelles pousses, ou seulement sur les vieilles pousses (feuilles originales coupées) ?
La plupart des plantes ont-elles au moins une feuille densément colonisée ? Ou n’y a-t-il qu’un ou deux adultes ou nymphes ici et là sur chaque plante ?

Idéalement, pour maintenir le cap du biocontrôle, nous aimerions avoir la preuve que a) les parsitoïdes sont efficaces, b) il y a peu de colonies denses d’aleurodes, c) la densité d’aleurodes sur les nouvelles pousses est généralement faible, d) la pression exercée sur la culture principale est moindre que sur les couleurs, et e) moins de 20 % de la culture totale est infestée (voir ici pour plus de détails sur la manière de le déterminer).

La preuve visuelle de votre programme biologique pour le travail des aleurodes peut être des nymphes ou des nymphes parasitées qui ont été nourries (sur la photo) par des guêpes parasites.

Si 3 sur 5 de ces affirmations ne sont PAS vraies pour votre culture, il est peut-être temps d’envisager sérieusement l’application de pesticides.

Comment savoir quels pesticides seront efficaces ?

C’est toujours la question à 64 000 dollars, car la résistance de l’aleurode Bemisia aux pesticides peut varier d’une année à l’autre, en fonction des produits chimiques utilisés par le producteur. Bien que les récents tests d’efficacité effectués aux États-Unis. peut nous donner des indices sur ce qu’il faut essayer, ils ne sont pas garantis. Une chose que vous pouvez faire pour être PLUS sûr, c’est un essai rapide de pesticides. Voici les bases de la mise en place et de l’échantillonnage :

1) Choisissez des bancs de vos plantes les plus infestées – en général, ce sont vos couleurs.

2. Tester 1 pesticide (ou combinaison de pesticides) par banc ou par demi-banc. Il vous faudra beaucoup de plantes à examiner pour voir ce qui fonctionne si le nombre d’aleurodes est faible ou modéré, car les aleurodes peuvent avoir une distribution inégale. Veillez à étiqueter, étiqueter, étiqueter, pour être sûr de savoir quel traitement est le bon.

3. Incluez un banc ou un demi-banc de plantes de contrôle – c’est-à-dire un traitement « ne rien faire », afin que vous puissiez voir dans quelle mesure vos effectifs d’aleurodes auraient changé (ou NON changé) si vous n’aviez pas appliqué de pesticides.

4. Mesurez la pression blanche AVANT de pulvériser pour obtenir une ligne de base. Il est préférable d’examiner les DEUX stades de vie de l’aleurode, pour avoir vraiment un sentiment de contrôle. A.) Examinez les aleurodes adultes par plante – normalement, ce serait une mauvaise mesure pour un insecte volant, mais les aleurodes de Bemisia se déplacent très peu. B) Observez les grandes nymphes. Les nymphes sont plus faciles à voir, mais constituent une étape de la vie qui est moins affectée par les pesticides, en général. Vous aurez besoin d’une lentille manuelle de 15x pour voir si les nymphes sont en bonne santé ou si elles ont l’air mort.

Les nymphes et les pupes des aleurodes en bonne santé apparaissent blanches/jaunes, et ont une forme tridimensionnelle dans les stades ultérieurs. Les aleurodes parasités apparaissent bruns, mais encore bouffis (indiqués par les flèches). Les nymphes et les pupes tuées par les pesticides auront l’air marron, plates et ratatinées, comme les aleurodes dont on s’est nourri.

Graeme Murphy montrant comment se fait la surveillance du poinsettia.

5. Surveillance des aleurodes adultes : Regarder seulement quelques plantes ne vous donnera pas une image assez bonne quand il s’agit d’aleurodes adultes. Cela est dû au fait que le nombre d’aleurodes adultes par plante a tendance à être faible (<10) en cas d’infestation modérée. Au lieu de cela, vous voulez avoir une idée de ce qui se passe sur l’ensemble du banc. Pour ce faire, repérez au moins 50 plantes par banc et comptez les aleurodes adultes en soulevant la plante et en la tournant lentement afin de pouvoir voir le dessous de la plupart des feuilles. Ensuite, vérifiez le point de croissance un peu plus attentivement, car les aleurodes adultes ont tendance à y déposer leurs œufs. Dans l’ensemble, cette méthode est BEAUCOUP plus rapide que de retourner chaque feuille, mais elle permet quand même d’obtenir un comptage assez précis. Utilisez cette méthode AVANT d’appliquer vos traitements, ainsi que 4 à 5 jours après pour vérifier l’efficacité si vous utilisez un arrosage (2 jours plus tard devraient suffire si vous utilisez une pulvérisation foliaire avec un insecticide qui a une activité de contact). Si vous avez le temps, refaites le comptage des adultes 10 à 14 jours après l’application du pesticide, car certains produits (par exemple, une pulvérisation de Beleaf) peuvent mettre un certain temps à agir sur les poinsettias.

6. Pour déterminer l’efficacité d’un pesticide sur les nymphes, vous devez avoir marqué les feuilles fortement infestées sur les plantes individuelles avec du ruban adhésif à l’étape 3 (en les numérotant au fur et à mesure avec un sharpie) et compté les nymphes saines par feuille marquée ou par plante. Essayez de trouver au moins 5 feuilles très infestées à marquer par traitement. Revenez sur ces mêmes plantes après 4 jours et voyez combien de nymphes sont passées de blanches/jaunes (saines) à ratatinées, plates et brunes (mortes). Vous pouvez les vérifier à nouveau jusqu’à 8 jours après la pulvérisation – après cela, elles se seront très probablement transformées en nymphes.

Signalez les plantes fortement infestées afin de pouvoir revenir et comparer le nombre d’adultes et de nymphes vivants/santé avant ET après l’application de pesticides.

8. Calculez la différence en pourcentage. Cela vous aidera à évaluer l’efficacité de vos différents pesticides. Pour ce faire, utilisez la formule suivante :

Premièrement : calculez la différence entre les deux chiffres que vous comparez.

Différence = nouveau numéro – numéro d’origine

Ensuite : divisez la différence par le nombre initial et multipliez la réponse par 100.

Différence en % = Différence ÷ Numéro d’origine × 100.

Si votre réponse est un nombre négatif, il s’agit d’une diminution en pourcentage. Si votre réponse est positive, alors il s’agit d’une augmentation en pourcentage.

Vous trouverez ci-dessous quelques exemples de données, tant pour les adultes que pour les nymphes. (NOTE : Il ne s’agit PAS de données réelles, et elles ne doivent pas être considérées comme des recommandations de pesticides). Le texte rouge indique que le nombre d’aleurodes augmente, tandis que le texte vert indique que le nombre d’aleurodes diminue de manière significative. Le texte noir indique un faible changement.

Surveillance des adultes – Essai de pesticides

Total WF Adultes (4 d)

Total WF Adultes (14 d)

Banc
Variété
Traitement
Plantes échantillonnées
Avant la pulvérisation
Après la pulvérisation
% Diff
Avant la pulvérisation
Après la pulvérisation
% Diff
1
Sentiments de Noël
Contrôle
50
320
350
9.4
320
402
25.6
2
La beauté de Noël
Ferrence
50
310
72
-76.8
310
51
-83.5
3
La beauté de Noël
Intercepter
50
267
81
-69.7
267
60
-77.5
4
Plaisir de Noël
Kontos/Beleaf
50
291
187
-35.7
291
45
-84.5

Et voici un exemple de données nymphales :

Surveillance des nymphes – Essai de pesticides
# Nombre de nymphes en bonne santé sur 5 feuilles marquées
# Nombre de nymphes en bonne santé sur 5 feuilles marquées
Banc
Variété
Traitement
Avant la pulvérisation
4 j Après la pulvérisation
% Diff
Avant la pulvérisation
8 j Après la pulvérisation
% Diff
1
Sentiments de Noël
Contrôle
61
55
-9.8
61
42
-31.1
2
La beauté de Noël
Ferrence
82
55
-32.9
82
10
-87.8
3
La beauté de Noël
Intercepter
63
44
-30.2
63
26
-58.7
4
Plaisir de Noël
Kontos/Beleaf
58
42
-27.6
58
26
-55.2

Sur la base de ces (fausses) données, il semble que les bios contribuent encore quelque peu à la lutte contre les aleurodes, le nombre de nymphes en bonne santé ayant diminué. Cependant, le nombre d’adultes continue d’augmenter, ce qui suggère qu’une application de pesticides est nécessaire pour suivre les nouvelles colonies qui se forment… Ici, j’utiliserais Ference comme premier choix, puisqu’il a permis d’éliminer le plus grand nombre d’adultes et de nymphes. En outre, Ference est considéré comme doux pour les guêpes parasites, de sorte que vous pouvez continuer à bénéficier de votre programme biologique même après la pulvérisation. Kontos/Beleaf semble être un bon choix pour une deuxième application (si nécessaire), et a également moins de chance d’éliminer les bios que Intercept.

Vous pouvez télécharger l’exemple de tableur de données (avec les formules) ici : exemple d’essai de pesticide poinsettia

Mises en garde (car il y a toujours un piège) :

Malheureusement, avec un essai de pesticide à application unique comme celui-ci, tout ce que vous faites VRAIMENT, c’est de voir comment réagit la partie la plus sensible de votre population d’aleurodes. N’oubliez pas que les DEUX biotypes B et Q de la Bemisia ont la capacité de résister. Une seconde application du même produit chimique sur la même culture peut ne pas vous permettre de tuer davantage.

C’est pourquoi il est judicieux de tester plusieurs produits chimiques à la fois. Vous saurez ainsi quels pesticides inclure dans un programme de rotation – votre meilleure chance de prendre soin de l’aleurode Bemisia si des pulvérisations répétées sont nécessaires.

Enfin, il va être impossible de déterminer si une nymphe d’aleurode ratatinée est morte à cause de l’alimentation de son hôte ou des pesticides (voir la photo en haut de ce post). C’est pourquoi il est bon de toujours inclure un banc de contrôle, afin de pouvoir contrôler dans quelle mesure votre programme biologique joue encore un rôle dans la réduction des parasites. Si une forte réduction des nymphes d’aleurodes en bonne santé se produit rapidement lors de vos traitements chimiques, et que vous ne voyez pas la même baisse dans le banc de contrôle, vous pouvez supposer que ce que vous voyez est dû aux pesticides.

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Cet article a été rédigé par Sarah Jandricic, spécialiste de la lutte antiparasitaire intégrée en floriculture sous serre, OMAFRA et traduit par serre2jardin.com. Les produits sont sélectionnés de manière indépendante. Serre2jardin.com perçoit une rémunération lorsqu’un de nos lecteurs procède à l’achat en ligne d’un produit mis en avant.